2024年4月13日发(作者：)

Western-Blot过程步骤详解中英文对照

实验四 蛋白质印迹分析

【实验目的】

了解蛋白质印迹法的基本原理及其操作和应用。

【实验原理】

蛋白质印迹法又称为免疫印迹法，这是一种可以检测固定在固相载体上蛋白质的免疫化

学技术方法。待测蛋白既可以是粗提物也可以经过一定的分离和纯化,另外这项技术的应用

需要利用待测蛋白的单克隆或多克隆抗体进行识别。

如图所示，可溶性抗原，也就是待测蛋白首先要根据其性质，如分子量，分子大小，电

荷以及其等电点等采用不同的电泳方法进行分离；通过电流将凝胶中的蛋白质转移到聚偏二

氟乙烯膜上；利用抗体（一抗）与抗原发生特异性结合的原理，以抗体作为探针钓取目的蛋

白。值得注意的是在加入一抗前应首先加入非特异性蛋白，如牛血清白蛋白对膜进行“封阻”

而防止抗体与膜的非特异性结合。

经电泳分离后的蛋白往往需再利用电泳方法将蛋白质转移到固相载体上,我们把这个过

程称为电泳印迹。常用的两种电转移方法分别为:

1.半干法: 凝胶和固相载体被夹在用缓冲溶液浸湿的滤纸之间,通电时间为10分钟~30

分钟。

2.湿法：凝胶和固相载体夹心浸放在转移缓冲溶液中，转移时间可从45分钟延长到过

夜进行。

由于湿法的使用弹性更大并且没有明显浪费更多的时间和原料，因此我们在这里只描述

湿法的基本操作过程。

对于目的蛋白的识别需要采用能够识别一抗的第二抗体。该抗体往往是购买的成品，已

经被结合或标记了特定的试剂，如辣根过氧化物酶。这种标记是利用辣根过氧化物酶所催化

的一个比色反应，该反应的产物有特定的颜色且固定在固相载体上，容易鉴别。因此可通过

对二抗的识别而识别一抗，进而判断出目标蛋白所在的位置。其他的识别系统包括碱性磷酸

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酶系统和I标记系统。

【实验材料】

1. 实验器材

SDS/PAGE实验相关材料；电转移装置；供电设备；PVDF膜（Millipore Immobion-P #IPVH

000 10）；Whatman 3MM 纸；其他工具：镊子、海绵垫、剪子、手套、小塑料或玻璃容器、

浅盘。

2. 实验试剂

⑴ 10x转移缓冲溶液（1L）：30.3g Trizma base(0.25M), 144 g甘氨酸(1.92M),加蒸馏水

至1L, 此时pH约为8.3，不必调整。

⑵ 1x转移缓冲溶液（2L）：在1.4L蒸馏水中加入400 ml甲醇及200 ml10x 转移缓冲

溶液。

⑶ TBS 缓冲溶液:将1.22g Tris (10 mM)和8.78g NaCl(150 mM)加入到1L蒸馏水中，用

HCl调节pH至7.5。

⑷ TTBS buffer：在1L TBS 缓冲溶液中加入0.5ml Tween 20（0.05%）。

⑸ 一抗：兔抗待测蛋白抗体（多克隆抗体）。

(6) 二抗：辣根过氧化物酶标记羊抗兔。

⑺ 3% 封阻缓冲溶液（0.5L）：牛血清白蛋白15mg加入TBS缓冲溶液并定容至0.5L，

过滤，在4°C 保存以防止细菌污染。

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⑻ 0.5%封阻缓冲溶液（0.5L）：牛血清白蛋白2.5mg加入TTBS缓冲溶液并定容至0.5L，

过滤，在4°C 保存以防止细菌污染。

⑼ 显影试剂：1ml 氯萘溶液 (30mg/ml甲醇配置)，加入10 ml甲醇，加入TBS缓冲溶液

至50 ml，加入30 ul 30% H

2

O

2

。

⑽ 染色液：1g氨基黑18B (0.1%)，250ml异丙醇(25%)及100ml乙酸(10%)用蒸馏水定容

至1L。

⑾ 脱色液：将350ml异丙醇(35%)和20 ml乙酸(2%)用蒸馏水定容至1L。

电 泳

膜转移

加入一抗

E

E

封闭和清洗

加入二抗

底 物

产 物

E

产 物

检 测

E

底 物

E

E

蛋白质印迹法基本操作过程

【实验操作】

⒈.蛋白质的分离

根据目的蛋白的性质，利用电泳方法将其进行分离。为提高电转移的效率，通常采用

SDS/PAGE技术。

分离实验结束后，首先将样品墙的上边缘用小刀去除，然后在胶板的右上角切一个小口

以便定位，小心放入转移缓冲溶液中待用。

⒉.电转移

⑴ 准备PVDF膜

根据胶的大小剪出一片PVDF膜，膜的大小应略微小于胶的大小。将膜置于甲醇中浸

泡1分钟，再移至转移缓冲溶液中待用。

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