2024年3月20日发(作者:)
第
27
卷第
6
期
4
2009
年
11
月
北京工商大学学报
(
自然科学版
)
JournalofBeijingTechnologyandBusinessUniversity
(
NaturalScienceEdition
)
Vol
1
27No
1
6
Nov.2009
文章编号
:1671
2
1513
(
2009
)
06
2
0004
2
03
玄参新鲜根和干燥根总
DNA
提取方法的比较研究
沈志雯
,
刘 蕾
,
徐 瑾
,
杨业然
,
何聪芬
(
北京工商大学化学与环境工程学院
,
北京
100048
)
摘 要
:
用十二烷基磺酸钠法分别提取玄参新鲜根及干燥根的
DNA.
电泳结果显示
,
从玄参新鲜
根中可提取到完整
DNA,
而从“发汗”后的玄参干燥根中提取的
DNA
已降解
.
使用紫外分光光度
法对新鲜根中提取的
DNA
进行纯度鉴定
,A
260
/A
280
为
1
1
83.
结果表明
,
所采用的十二烷基磺酸钠
法可经济高效地从玄参根部提取到高质量的
DNA.
关键词
:
玄参
;DNA
提取
;
十二烷基磺酸钠法
中图分类号
:TS218;Q751
文献标识码
:A
玄参
(
Scrophularianingpoensis
Hemsl.
)
为玄参
科玄参属多年生宿根类草本植物
,
以根入药
,
别名元
参、黑参、浙玄参、乌元参等
,
主产于浙江、湖北、江
苏、江西等省
,
为常用中药
.
玄参始载于《神农本草
经》
,
列为中品
,
其味甘、苦、咸
,
性微寒
,
归肺、胃、肾
经
,
具有凉血滋阴、泻火解毒之功效
.
高质量
DNA
的提取已经成为分子生物学研究的重要技术环节之
一
,
能否快速、经济地提取植物总
DNA
以及所提取
的
DNA
质量的高低将直接影响整个实验结果
.
与
其他提取植物
DNA
方法比较
,
曾有报道十二烷基
硫酸钠
(
Sodiumdodecylsulfate,SDS
)
法对植物根中
DNA
的提取有效
,
本文主要研究玄参根部
DNA
提
取方法的优化
,
以建立适宜药材玄参
DNA
的提取
方法
.
(
pH
值为
8
1
0
)
、
100mmol/L
氯化钠、
1%
巯基乙醇、
20%
十二烷基硫酸钠
2
1
5mol/L
醋酸钾
(
pH
值为
4
1
8
)
;3mol/L
醋酸钠
(
pH
值为
4
1
8
)
;
酚氯仿
(
1
∶
1
)
;
异丙醇
;70%
乙醇
;
无菌水
;RNA
酶
(
RNaseA
)(
sig
2
ma
)
;
所用试剂均为国产或进口分析纯
.
1
1
3
实验仪器
4K15
型超速冷冻离心机
,Sigma;PowerPac
1000
型电泳仪
,BIORAD;DYCP
2
33A
型电泳槽
,
北
京市六一仪器厂
;AlphalmagerHP
型凝胶成像系统
等
.
1
1
4
实验方法
[1-4]
1
1
4
1
1
干燥根部
DNA
提取方法
玄参根部含有大量的酚、萜、苷
[5]
类物质
,
这些
物质对
DNA
的提取有一定的影响
,
因此
,
对玄参干
燥根设置平行对照组
,
一组为不处理
,
一组为
70%
乙醇浸泡
2h
处理
.
1
)
取玄参根部
0
1
1g
液氮研磨
,
加入
600
μ
L65
℃预热的提取缓冲液及
66
μ
L20%SDS;2
)
65
℃水
浴保温
45min,4
℃
10000r/min
离心
10min;3
)
取
上层清液加入
2/3
体积的醋酸钾溶液
,
冰上静置
30
min;4
)
4
℃
10000r/min
离心
10min;5
)
取上层清
液加入等体积酚氯仿溶液
,
充分混匀后
4
℃
10000
r/min;6
)
取上层清液加入
0
1
6
倍体积的异丙醇
,
混
1
材料与方法
1
1
1
实验材料
玄参新鲜根购于浙江省磐安大盘镇中药材市
场
;
玄参干燥根购于北京市航天桥同仁堂药房
,
产自
浙江
.
1
1
2
SDS
法所用试剂
提取缓冲液
:100mmol/L
三羟甲基氨基甲烷盐
酸盐
(
Tris
2
HCl
)(
pH
值为
8
1
0
)
、
50mmol/LEDTA
收稿日期
:2009
2
04
2
10
基金项目
:
北京市教育委员会自然科学基金资助项目
(
KM2
)
.
)
,
女
,
浙江宁波人
,
研究方向为生物工程
;
作者简介
:
沈志雯
(
1988
—
)
,
女
,
河北无极人
,
教授
,
博士
,
主要从事植物分子生物学方面的研究
.
通讯作者
.
何聪芬
(
1966
—
© 1994-2010 China Academic Journal Electronic Publishing House. All rights reserved.
第
27
卷第
6
期 沈志雯等
:
玄参新鲜根和干燥根总
DNA
提取方法的比较研究
5
匀后于
-20
℃保存
2h;7
)
4
℃
10000r/min
离心
10
min;8
)
沉淀物干燥后溶于
400
μ
L
无菌水中
,
加入
等体积酚氯仿溶液
,
充分混匀
;9
)
4
℃
10000r/min
离心
10min;10
)
加入上层清液体积
1/10
的醋酸钠
溶液
,
混匀后加入
2
倍体积的无水乙醇
,-20
℃保
存
2h;11
)
4
℃
10000r/min
离心
20min,
用
70%
乙
醇洗涤
,
干燥后溶于
50
μ
L
无菌水中
,
放置于
-20
℃
保存
.
1
1
4
1
2
以新鲜根为材料
SDS
法提取
DNA
乙醇浸泡处理
(
图
1
中
3
~
4
)
得到的
DNA
亮度明显
高于未处理组
(
图
1
中
1
~
2
)
,
证明
70%
乙醇浸泡可
有效减少根部多酚物质对
DNA
的影响
.
2
1
2
SDS
法提取新鲜根
DNA
结果分析
SDS
法提取玄参新鲜根中
DNA
结果如图
2.
由图
2
可见
,DNA
主带明显且清晰无拖尾
,
可以提
出玄参新鲜根的总
DNA.
结果说明
,
本研究所使用
的
SDS
法可以有效去除蛋白质及多酚类物质
;
加入
RNA
酶可有效去除
RNA,
则电泳图无
RNA
条带出
现
.
然而
,DNA
主带的亮度不高
,
产率较低
,
推测原
因是玄参根叶片中含有较多的酚类物质
,
极易自发
氧化褐变或在多酚氧化酶
(
PPO
)
作用下发生酶促褐
变
,
生成褐色的醌类物质等
,
这些物质与核酸发生不
可逆结合而使提出的核酸产率下降
.
第
1
)
至
7
)
步与
1
1
4
1
1
中相同
.
沉淀物干燥后
溶于
400
μ
L
无菌水中
,
加入
2
μ
LRNA
酶
(
RNase
A
)
,37
℃水浴
30min,
其后步骤与
1
1
4
1
1
中
9
)
至
11
)
步相同
.
1
1
5
DNA
质量检测
电泳
5
μ
LDNA
与
1
μ
L6
×
LoadingBuffer
混合
均匀
,1
×
TAE
电泳缓冲液
,0
1
8%
琼脂糖凝胶
,150V
30min
快速电泳
,EB
染色后使用凝胶成像系统分
析
.
稀释
50
倍后用紫外分光光度法测量
DNA
纯
度
.
2
实验结果分析
对玄参干燥根进行预处理结果显示
,70%
乙醇
浸泡
2h,
处理后溶液呈棕色
.
玄参根部含有环烯醚
萜苷类成分
[6]
,
该类成分是玄参发汗后变黑的主要
成分
,
在乙醇溶液中容易被析出
.
2
1
1
SDS
法提取干燥根
DNA
结果分析
图
2
SDS
法提取玄参新鲜根
DNA
结果
1
~
2:
为玄参新鲜根
DNA
用
SDS
法提取玄参干燥根中
DNA,
结果如图
1.
由图
1
可见
,
无完整的
DNA
主带出现
,
但有大量
因以玄参干燥根为材料无法提取到完整的
DNA,
所以仅对新鲜根为材料
SDS
法提取到的
DNA
进行纯度检验
,OD
260/280
为
1
1
83,
接近理论值
1
1
8,DNA
质量浓度为
402
1
5
μ
g/mL.
根据电泳图结
弥散的条带
,
根据大小判断
DNA
片段已降解为小
分子
;
点样孔亮度较低
,
蛋白质及酚污染较少
.70%
果及分光光度计检测结果
,
提取到的
DNA
质量较
高
.
3
结 论
使用
SDS
法提取玄参新鲜根可以得到条带清
晰
,
纯度
(
OD
260
=1
1
83
)
较高的
DNA.
试验结果说明
,
采用玄参新鲜根能提取到完整
的
DNA,
而采用玄参干燥根提取的
DNA
已被降解
,
推测是玄参的制药过程经过“发汗”作用所造成的影
响
.
“发汗”过程是将供药用的块根
,
白天晾晒
,
夜间
图
1
SDS
法提取玄参干燥根
DNA
结果
1
~
2:
未处理的玄参干燥根
DNA
提取结果
;
3
~
4:70%
乙醇浸泡处理的玄参干燥根
DNA
提取结果
.
堆积
,
反复堆积晾晒至半干
,
堆积
2
~
3d
“发汗”
,
使
块根内部变黑
,
再进行白天晾晒、夜间堆积
,
直至全
干
;
遇雨天则用炕烘烤
,
温度
60
℃左右
,
并适时翻
© 1994-2010 China Academic Journal Electronic Publishing House. All rights reserved.
6
北京工商大学学报
(
自然科学版
)
2009
年
11
月
动
,
烘至半干时进行“发汗”
,
再烘干
,
随后又经长时
间存储、运输
,
导致
DNA
在这些过程中被降解
,
在
提取过程中无法得到完整
DNA.
此外
,
玄参根部含
有大量的酚、萜、苷类物质
.
酚类物质极易自发氧化
褐变或在多酚氧化酶
(
PPO
)
作用下发生酶促褐变
,
生成褐色的醌类物质等
.
这些物质与核酸发生不可
逆结合而使提取的核酸产率下降
.
其中
,
环烯醚萜
类和苯丙素苷类化合物含量较高
,
这两类化合物溶
于乙醇
,
经
70%
乙醇浸泡处理后
,
可使部分环烯醚
萜类和苯丙素苷类物质溶出
,
如果能够去除一部分
这类物质
,
可减少其对
DNA
提取的影响
.
本研究在干燥根的
DNA
提取中
,
对直接研磨
与液氮研磨干燥根提取
DNA
分别进行了研究
,
结
果表明
,
直接研磨效果与液氮研磨一致
.
推测原因
是干燥根本身质地较为坚硬同时缺少水分
,DNA
酶
活性很低
,
不会对干燥根中的
DNA
造成太大的影
响
.
本研究对加入异丙醇后
-20
℃保存时
,
时间对
DNA
提取的影响进行了研究
,
选择的保存时间分别
为
1h
、
2h
、过夜
.
结果表明
,
加入异丙醇后
-20
℃
保存
1h
产率最低
,
而保存
2h
及过夜产率较高且相
近
.
因此
,
选择
2h
为最优保存时间
.
参考文献
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,
周小江
,
罗京
.
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DNA
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2
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NguyenAT,JeanineF,MalonneH,es
2
terandaniridoidglycosidefromScrophularianingpoensis
[J].Phytochemistry,2005,66
(
10
)
:1186
2
1191.
COMPARATIVESTUDYONEXTRACTINGDNAFROM
FRESHROOTSANDDESICCATEDROOTSOF
SCROPHULARIANINGPOENSIS
HEMSL.
SHENZhi
2
wen,
LIULei,
XUJin,
YANGYe
2
ran,
HECong
2
fen
(
CollegeofChemicalandEnvironmentalEngineering,BeijingTechnologyand
BusinessUniversity,Beijing
100048
,China
)
Abstract:
Scrophularianingpoensis
icaltradtitonalChineseherb,whichcontainsphe
2
nolics,terpenesandglycoside,paper,themodifiedmethodsofSDSwereusedtoextract
ultsshowthatthegenomic
DNAcanextractfromfreshroots,A
260
/A
280
ofge
2
nomicDNAfromfreshrootsis1
1
lusion,thisprovidesaneconomic,convenientandeffec
2
tivemethodofDNAisolationforabiologicalstudyof
scrophularianingpoensis
Hemsl.
Keywords:
scrophularianingpoensis
Hemsl.;DNAisolation;modifiedSDS
(
责任编辑
:
叶红波
)
© 1994-2010 China Academic Journal Electronic Publishing House. All rights reserved.
发布者:admin,转转请注明出处:http://www.yc00.com/web/1710886029a1832644.html
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